Cidaria truncata perfuscata (Haworth, 1809) accepté comme Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767)	988614

TRAITS

 

Trophic category : nectarivore (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : mandatory
    Biological stage : adult
    Source : Walton, R., Sayer, C., Bennion, H. & Axmacher, J. 2020. Nocturnal pollinators strongly contribute to pollen transport of wild flowers in an agricultural landscape. Biology Letters, 16(5): 20190877.

 

Environment : floricolous (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Biological stage : adult
    Specificity : mandatory
    Source : Walton, R., Sayer, C., Bennion, H. & Axmacher, J. 2020. Nocturnal pollinators strongly contribute to pollen transport of wild flowers in an agricultural landscape. Biology Letters, 16(5): 20190877.

 

Habitat : F3 - Fourrés tempérés et méditerranéo-montagnards (Niveau 2 de EUNIS_2012) (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : regular
    Source : Robineau, R., Bachelard, P. & Gibeau, C. 2011. Guide des papillons nocturnes de France. Les guides du naturaliste. Delachaux & Niestlé, Paris. 288 pp.

 

Habitat : G5.8 - Coupes forestières récentes (Niveau 3 de EUNIS_2012) (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : regular
    Source : Robineau, R., Bachelard, P. & Gibeau, C. 2011. Guide des papillons nocturnes de France. Les guides du naturaliste. Delachaux & Niestlé, Paris. 288 pp.

 

Habitat : J4.1 - Sites routiers, ferroviaires et autres constructions désaffectées sur des surfaces dures (Niveau 3 de EUNIS_2012) (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : regular
    Source : Robineau, R., Bachelard, P. & Gibeau, C. 2011. Guide des papillons nocturnes de France. Les guides du naturaliste. Delachaux & Niestlé, Paris. 288 pp.

 

Habitat : I2 - Zones cultivées des jardins et des parcs (Niveau 2 de EUNIS_2012) (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : regular
    Source : Robineau, R., Bachelard, P. & Gibeau, C. 2011. Guide des papillons nocturnes de France. Les guides du naturaliste. Delachaux & Niestlé, Paris. 288 pp.

 

Habitat : FA - Haies (Niveau 2 de EUNIS_2012) (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Specificity : regular
    Source : Robineau, R., Bachelard, P. & Gibeau, C. 2011. Guide des papillons nocturnes de France. Les guides du naturaliste. Delachaux & Niestlé, Paris. 288 pp.

 

Circadian rhythm : Night (par synonymie avec Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767))
    Behavior : flying
    Biological stage : adult
    Source : Hausmann, A. & Viidalepp, J. 2012. The Geometrid Moths of Europe. Volume 3: Larentiinae I. Apollo Books: 743 pp.

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Traits dérivés des parents

 

Type of reproduction : gonochoric / dioecious (dérivé de Lepidoptera Linnaeus, 1758)

INTERACTIONS ENTRE ESPECES

 

Barbastella barbastellus (Schreber, 1774) [adulte] est un prédateur de (relation régulière) Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte]      [créé le 30 mai 2024 par Dupont]
     Références : Carr et al. (2020)

 

Zele deceptor (Wesmael, 1835) [larve] est parasitoïde de (relation régulière) Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [larve]      [créé le 12 mars 2022 par Dupont]
     Références : van Achterberg (1979)

 

Cotesia spuria (Wesmael, 1837) [larve] est parasitoïde de (relation régulière) Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [larve]      [créé le 12 mai 2024 par Dupont]
     Références : Abdinbekova et al. (2017) , Papp (1989)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) (relation régulière) Convolvulus arvensis L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] est un pollinisateur de (relation régulière) Convolvulus arvensis L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) (relation régulière) Mentha aquatica L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] est un pollinisateur de (relation régulière) Mentha aquatica L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) (relation régulière) Stellaria graminea L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] est un pollinisateur de (relation régulière) Stellaria graminea L., 1753      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) (relation régulière) Trifolium dubium Sibth., 1794      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [adulte] est un pollinisateur de (relation régulière) Trifolium dubium Sibth., 1794      [créé le 16 nov. 2024 par Dupont]
     Références : Walton et al. (2020)

 

Dusona blanda (Förster, 1868) [larve] est parasitoïde de (relation régulière) Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [larve]      [créé le 29 avr. 2024 par Dupont]
     Références : Horstmann (2011)

 

Protapanteles immunis (Haliday, 1834) [larve] est parasitoïde de (relation régulière) Dysstroma truncata (Hufnagel, 1767) [larve]      [créé le 5 juin 2024 par Dupont]
     Références : Papp (1989)

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Interactions dérivées des parents

 

Nemoraea pellucida (Meigen, 1824) est parasitoïde de Geometridae Leach, 1815      [créé le 10 oct. 2024 par Daszkiewicz]
     Références : Kugler (1967)

 

Perilampus ruficornis (Fabricius, 1793) est associé à (relation régulière) Geometridae Leach, 1815      [créé le 27 mars 2023 par Ramage]
     Références : Mitroiu & Koutsoukos (2023)

 

Chrysocosmius auratus (Fallén, 1820) est parasitoïde de Geometridae Leach, 1815      [créé le 10 oct. 2024 par Daszkiewicz]
     Références : Kugler (1967)

 

Rhacognathus punctatus (Linnaeus, 1758) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Eulophidae Westwood, 1829 [larve] est parasitoïde de (relation principale) Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 juil. 2022 par Dupont]

 

Trichogramma lacustre Sorokina, 1978 est parasite de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 20 mai 2024 par Daszkiewicz]
     Références : Sorokina (1978)

 

Zicrona caerulea (Linnaeus, 1758) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Troilus luridus (Fabricius, 1775) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Pinthaeus sanguinipes (Fabricius, 1781) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Picromerus bidens (Linnaeus, 1758) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Picromerus nigridens (Fabricius, 1803) est un prédateur de Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 15 oct. 2016 par TERCERIE]
     Références : Lupoli & Dusoulier (2015)

 

Heterorhabditis bacteriophora Poinar, 1976 est parasite de (relation facultative) Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 10 mars 2021 par Daszkiewicz]
     Références : Milstead (1978)

 

Solenopsis geminata (Fabricius, 1804) est un prédateur de (relation régulière) Lepidoptera Linnaeus, 1758      [créé le 5 nov. 2018 par Petitteville]
     Références : Vayssières et al. (2001)

 

Deroceras laeve (O.F. Müller, 1774) acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 24 oct. 2022 par Gargominy]
     Références : Barker & Efford (2004)

 

Aldrovanda vesiculosa L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 16 mars 2017 par TERCERIE]

 

Ibicella lutea (Lindl.) Van Eselt., 1929 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Daudebardia rufa (Draparnaud, 1805) acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) Insecta Linnaeus, 1758 [larve]      [créé le 16 févr. 2024 par Mélet-Garel]
     Références : Welter-schultes (2012)

 

Daudebardia brevipes (Draparnaud, 1805) acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) Insecta Linnaeus, 1758 [larve]      [créé le 16 févr. 2024 par Mélet-Garel]
     Références : Welter-schultes (2012)

 

Deroceras panormitanum auct. non (Lessona & Pollonera, 1882) acquiert des nutriments par (y compris herbivorie) Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 24 oct. 2022 par Gargominy]
     Références : Barker & Efford (2004)

 

Aldrovanda L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 16 mars 2017 par TERCERIE]

 

Drosera L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Pinguicula L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Sarracenia L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Utricularia L., 1753 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Heterorhabditis Poinar, 1976 est parasite de (relation obligatoire) Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 21 juil. 2021 par TERCERIE]

 

Nepenthes vieillardii Hook.f. est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 2 mars 2017 par TERCERIE]

 

Catopsis berteroniana (Schult. & Schult.f.) Mez, 1896 est un prédateur de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 16 mars 2017 par TERCERIE]

 

Pandora psocopterae S.Keller, 2011 est parasite de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 13 nov. 2021 par TERCERIE]
     Références : Keller (2011)

 

Mycobacterium ulcerans MacCallum, 1948 est parasite de Insecta Linnaeus, 1758      [créé le 18 mars 2024 par Daszkiewicz]
     Références : Carolan et al. (2014)